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Équipements et réactifs stériles

La technique aseptique exige que toutes les surfaces, tous les équipements et tous les réactifs qui peuvent entrer en contact avec l'échantillon soient stérilisés ou désinfectés pour éviter toute contamination. Il existe différentes techniques de stérilisation et de désinfection en fonction des cas d'utilisation. Les techniques les plus courantes lors de la culture d'un échantillon en laboratoire sont énumérées ci-dessous.

Tableau présentant différents objets, la méthode de désinfection ou de stérilisation utilisée et le mécanisme de stérilisation. Premier objet : le plan de travail. Méthode : alcool. Mécanisme : une concentration de 70% ou plus d'alcool comme l'éthanol déstabilisent les membranes. Objet suivant : milieux de culture et embouts de pipette. Méthode : autoclave. Mécanisme : La chaleur humide coagule les protéines et tue les cellules. Les récipients ne doivent être ouverts que dans une zone de travail stérile et le col des bouteilles doit être stérilisé dans la flamme d'un bec bunsen. Objet suivant : petit matériel comprenant les anses de platine et les étaleurs. Méthode : bec Bunsen ou pré-stérilisé. Mécanisme : La chaleur extrême de la flamme bleue d'un bec Bunsen tue les cellules. Le matériel pré-stérilisé, généralement autoclavé, doit être utilisé dans le poste de sécurité microbiologique. Dernier objet : les mains. Méthode : désinfecter ou porter des gants. Mécanisme : Lors de l'utilisation du bec Bunsen, les mains doivent être soigneusement lavées ou désinfectées avant et après la mise en culture. Lors de l'utilisation du poste de sécurité microbiologique, les gants doivent être changés.